Récepteurs Nucléaires, Maladies Métaboliques et Cardiovasculaires (RNMMC)

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• Implication des récepteurs nucléaires dans les perturbations du métabolisme et de l’équilibre énergétique • Perturbations caractéristiques du diabète de type 2 • Rôle régulateur des récepteurs nucléaires dans les processus inflammatoires dans le tissu adipeux et la paroi vasculaire • Mécanismes d’actions moléculaires des récepteurs nucléaires impliqués dans la progression du diabète de type 2 • Pathophysiologie des stades précoces (syndrome métabolique) et tardifs du diabète de type 2, de l’obésité et des maladies cardiovasculaires • Contribution des cellules du système immunitaire dans la pathophysiologie du diabète et des maladies cardiovasculaires • Récepteurs nucléaires (FXR, Reverbα, RORα et les récepteurs orphelins) • Potentiel thérapeutique de ligands sélectifs

Nombre de chercheurs : 53
Nombre de doctorants :
Nombre de personnel d'appui à la recherche : 56
Effectif total : 129

• ERC Immunobile - Acide biliaire, immunométabolisme, homéostasie des lipides et du glucose • ANR-NASHILCCD8 – Contribution des ILC et des cellules T CD8 à la stéatose hépatique non alcoolique et à sa progression vers l’hépatocarcinome (2019-2022) • ANR-CALMOS – Mitochondrial calcium homeostasis and cardiac arrhytmias in the metabolic syndrome (2019-2022) • ANR-MET Intestin – Effet aigu de la metformine sur le co-transport intestinal sodium-glucose (2019-2022)

• Human aortic valve interstitial cells display proangiogenic properties during calcific aortic valve disease. N. Gendron, M. Rosa, A. Blandinières, Y. Sottejeau, E. Rossi, E. Van Belle, S. Idelcadi, S. Lecourt, A. Vincentelli, A. Cras, R. Jashari, R. Chocron, Y. Baudouin, T. Pamart, I. Bieche, N. Nevo, B. Cholley, J. Rancic, B. Staels, P. Gaussem, A. Dupont, A. Carpentier, S. Susen, D.M. Smadja. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol., 2021, 41, 415-429. • Beyond the rule of 5: impact of PEGylation with various polymer sizes on pharmacokinetic properties, structure-properties relationships of mPEGylated small agonists of TGR5 receptor. V. Hoguet, M. Lasalle, M. Maingot, G. Dequirez, R. Boulahjar, F. Leroux, C. Piveteau, A. Herledan, A. Biela, J. Dumont, O. Chavez-Talavera, L. Belloy, I. Duplan, N. Hennuter, L. Butruille, S. Lestavel, E. Sevin, M. Culot, F. Gosselet, B. Staels, B. Deprez, A. Tailleux, J. Charton. J. Med. Chem., 2021, 64, 1593-1610. • Cholangiopathy and biliary fibrosis in Cyp2c70-deficient mice are fully reversed by ursodeoxycholic acid. J.F. De Boer, H.D. De Vries, A. Palmiotti, R. Li, M. Doestzada, J.A. Hoogerland, J. Fu, A.M. La Rose, M. Westerterp, N.L. Mulder, M.V. Hovingh, M. Koehorst, N.J. Kloosterhuis, J.C. Wolters, V.W. Bloks, J.T. Haas, D. Dombrowicz, B. Staels, B. Van De Sluis, F. Kuipers. Cell. Mol. Gastroenterol. Hepatol., 2021, 11, 1045-1069. • Apolipoprotein A5 controls fructose-induced metabolic dysregulation in mice. C. Ress, J. Dobner, K. Rufinatscha, B. Staels, M. Hofer, S. Folie, B. Radlinger, T.E. Adolph, E.M. Rubin, M. Roden, H. Tilg, S. Kaser. Nutr. Metab. Cardiovasc. Dis., 2021, 31, 972-978. • NASH-related increases in plasma bile acid levels depend on insulin resistance. G. Grzych, O. Chavez-Talavera, A. Descat, D. Thuillier, A. Verrijken, M. Kouach, V. Legry, H. Verkindt, V. Raverdy, B. Legendre, R. Caiazzo, L. Van Gaal, J.F. Goossens, R. Paumelle, S. Francque, F. Pattou, J.T. Haas, A. Tailleux, B. Staels. JHEP Reports, 2021, 3, 100222. Découvrez la liste complète des publications ici.

Nationales : Institut Pasteur de Paris, Universite de Paris, Sorbonne Universite, Universite de Montpellier Internationales : University of Antwerp (Belgique), University of Liege (Belgique), Maastricht University (Allemagne)

Master Biologie-Santé

Biochimie • Mesure des paramètres biochimiques circulants (glucose, insuline, transaminases, acides gras libres, …) • Mesure des concentrations en lipides et lipoprotéines • Détermination des profils de distribution lipidique • Détermination des profils d’acides biliaires (21 espèces) dans les milieux biologiques (plasma, feces, bile) Histologie (Ultra-microtomie, Immunohistochimie, Microscopie, Station de microdissection laser) Immunophénotypage (Cytométrie de flux) Biologie Cellulaire • Lignées cellulaires (Cellules hépatiques humaines et murines, cellules préadipocytaires murines, fibroblastes murins, cellules leucocytaires humaines, cellules bêta-pancréatiques murines, cellules rénales humaines, cellules entéroendocrines murines…) • Cultures primaires (Hépatocytes humains et murins, monocytes et macrophages humains et murins) • Organoïdes intestinaux humains et murins Biologie Moléculaire (Microarray, - Protéomique, PCR en temps réel) In Vivo • Imagerie animale (scanner/IRM petit animal) • Transplantation de moelle osseuse • Mesures de paramètres métaboliques chez l’animal • Mesures plethysmographiques (fonction pulmonaire) • Mesures des fonctions cardiovasculaires • Modèles animaux génétiquement modifiés • Modèles animaux pour l’étude de l’allergie

Prestations de conseil sur l'ensemble de nos expertises

• Inserm
• Université de Lille
• Institut Pasteur de Lille

CHU de Lille

446 - Biologie Santé de Lille (BSL)

Labex EGID

Santé et agroalimentaire (Nutrition-Santé-Longévité)

• Santé et Nutrition
• Nouvelles approches thérapeutiques